PK/PD van biologicals: toedieningsroutes en toedieningsvormen - vaccins - analyse technieken
16 belangrijke vragen over PK/PD van biologicals: toedieningsroutes en toedieningsvormen - vaccins - analyse technieken
Als de molecuulgewicht doormiddel van fluorecentie (ijklijn) en UV/VIs van elkaar afwijken wat kan je hieruit dan gaan concluderen
Bij een eiwit formulering bestaande uit het eiwit (100kDa) en verschillende laag moleculaire hulpstoffen vermoedt men afbraak en aggregatie. Er wordt een sample geanalyseerd met SEC gekoppeld met UV/VIS (280nm)
Om te onderzoeken of de quaternaire structuur van een hetrotetrameer na formulering nog intact is kan je sds-page gaan gebruiken. Welke sample heb je minimaal nodig om het percentage aan eiwit dat uit elkaar is gevallen door het formuleren vast te stellen?
- Hogere cijfers + sneller leren
- Niets twee keer studeren
- 100% zeker alles onthouden
Bij HIC kan je eiwitten prima scheiden, maar daarvoor moet je wel opletten in welk oplosmiddel je de eiwitten opbrengt. Om eiwitten in toenemende mate van de kolom af te krijgen moet je ook weten hoe je de samenstelling van je eluens aanpast. Welk oplosmiddel en gradient past het beste bij hic
hoge concentratiezout zorgt ervoor dat de eiwitten hydrofoob worden waardoor ze kunnen gaan hechten aan dehydrofobe stationare fase (hydrofobe interactie).
en als je eluens (vloeibare fase) een afnemende concentratie zout heeft dan is het zo dat de eiwitten los komen van de stationaire fase.
de minst hydrofobe gaan als eerst eruit (kortste retentijd)
de meest hydrofobe gaan als laatst eruit (grootste retentiijd)
Kun je deamidering met massa specxtrometrie kan gaan aantonen?
Kun je aggragatie aantonen via massa spectrometrie?
trypsine breekt eiwitten af in stukjes.
De informatie over de eiwit aggregatieteostand van het oorspronkelijke eiwit gaat verloren omdat het eiwit al is opgeslitst
Welke uitspraakt over SDS-PAGE gevolgd door coomassie kleruing (algemene eiwit kleuring) klopt?
-het klopt niet dat grote moleculen verder door de gel lopen dan kleine
-het klopt ook niet dat gereduceerde igG-formuleringen altijd badjes laten zien dan niet-gereduceerd
-een gefosforyleerd eiwit laat altijd een extra band zien tov het niet-gefosforyleerde eiwit.
Bij SEC, op basis van wat vindt er scheiding plaats?
ala je hdyrodymaische straal verandert kun je ook conformatie gaan aantonen
Wat is het evrschil tussen SDS-PAGE en native PAGE?
-->surfactant zorgt voor ontvouwing de eiwit wordt negatief geladen en de positieve lading gaat die neutraliseren.
de meest negative blijven in het begin haken. (en daarom zijn ze ook groter)
verschillen van intensiteit bandjes: aanwezigheid van suikers (verminderde de kleur).
kleiner deeltjes zullen onderin tercht komen omdat ze minder sterische hindering ondervinden
-Native PAGE (wordt er geen SDS toegevoegd)-->dan worden de eiwitten gescheiden op basis van grootte en lading.
Waarom zou men SDS gebruiken bij SDS-PAGE?
Gedenatureerde insuline bevindt zich op een hogere positie op de gel dan de native insuline, hoe komt dat?
Daarnaast kan gedenatureerde insuline ook gaan aggregeren en daardoor hoger op de gel te komen.-->dan heb je te maken met aggregaten van verschillende groote, dat geeft meestal een bredere band wat te zien is op de gel.
Hoe bewijs je als iets ontleedt is in een sds-page?
of een marker( grootte) toe te voegen zodat je weet welke grootes er wel te detecteren waren
Sds page heeft een dikke streep wat is dat? Na het toevoegen van dtt heb je die streep niet
Wat zou je zien als afbraak producten waren tussen verhitten en niet-verhitten?
Verwacht je dat er aggregaten heeft plaatsgevonden bij de charge die tijden het weekend buiten de koelakst stond? Kun j edat zien op SDS-PAGE?
Zijn hoge zoutconcentraties gunstig of ongunstig voor het oplossen van eiwitten
De vragen op deze pagina komen uit de samenvatting van het volgende studiemateriaal:
- Een unieke studie- en oefentool
- Nooit meer iets twee keer studeren
- Haal de cijfers waar je op hoopt
- 100% zeker alles onthouden